Entwiicklung lymphozytärer Subpopulationen bei Tumorpatienten nach subkutaner Applikation von Mistelextrakten
A. Bussing (a) - A. Rosenberger (b) - C. Stumpf (c) - M. Schietzel (c)
a. Abteilung für angewandte Inmunologie, Krebsforschung Herdecke, Universität Witten/Herdecke, Gemeinschaftskrankenhaus Herdecke.
b. Institut für Medizinische Informationsverabeitung, Universität Tübingen
c. Tumor-Ambulanz, Gemeinschaftskrankenhaus Herdecke.
Schlüsselwörter
Tumor - Patienten - Misteltherapie - Lymphozyten - Subpopulationen
Zusammenfassung
Fragestellung: Es soilte überprüft werden, ob die subkutane Misteltherapie in üblicher Dosissteigerung zur Immunsuppression oder immunstimulation, ausgedrückt als signifikante Reduktion oder Vermehrung definierter Populationen, führt. Patienten und Methoden: Hierzu wurden 23 Tumorpatienten mit unterschiedlichen Tumorentitäten subkutan mit einem wässrigen Mistelextrakt (Helixor) behandelt. Über einen Zeitraum von 7 Monaten nach Therapiebeginn wurden die peripheren Lymphozyten durchflusszytometrisch differenziert. Ergebnisse und Schlussfolgerungen: Im Beobachtungszeitraum kam es zur anteilmässigen Vermehrung der Lymphozyten und zum zahlenmässigen Anstieg der natürlichen Killer(NK)-Zellen. Für die Anzahl lymphozytärer Subpopulationen (CD19+ B-Zellen, CD4+ T-Helfer/ Induktor-Lymphozyten, CD8+ CD28- suppressorische Zellen, CD8+ CD28+ zytotoxische Zellen) und den Anteil CD25+ (aktivierter) T-Zellen zeigte sich zudem ein statistisch auffälliiger Trend, der aufgrund des multiplen Testproblems der Statistik jedoch nicht als signifikant bewertet werden konnte. Für die Anzahl der Leukozyten fiel hingegen ein nichtsignifikantes Abfalien nach Therapiebeginn auf. Die aus früheren Beobachtungen resultierende Annahme, dass es 2-3 Monate nach Therapiebeginn zu einer Vermehrung definierter T-Zell-Subpopulationen kommt, konnte auf Basis der vorliegenden. Daten statistisch nicht bewiesen werden. Dennoch zeigte sich eine statistisch auffällige Häufigkeitsverteilung der Maximal-Monate für CD19+ B-Zellen, CD4+ T-Zellen, CD8+ Zellen, CD8+ CD28+ zytotoxische Zellen und CD16+/CD56+ NK-Zellen, was auf die Richtigkeit der Annahme hinweist. Mit Ausnahme der Leukozytenzahi konnten also nur positive Veränderungen der Immunparameter festgestelit werden. Die Reaktionen zeigten allerdings deufliche interindividuelle Unterschiede im Ansprechen auf den Extrakt, wobei auch Dosissteígerungen >3 ng Mistellektin (bezogen auf Gesamtextrakt) pro kg Kbrpergewicht zu Vermehrungen der CD4+ T-Helfer/Induktor-Zellen und nicht zur Immunsupipression führten. Ein eingeschränktes immunologisches Ansprechen auf die Extrakte war insbesondere bei Patienten mit verminderter Anzahl peripherer T-Zellen zu beobachten, während Patienten mit normaler T-Zell-Zahl reagibler waren.
Key Words
Tumour patients - Mistletoe therapy - Lymphocyte subsets
Summary
Lymphocye Subsets in Tumour Patients during Subcutaneous Mistíetoe Therapy
Objective: In order to exclude the possibility that mistletoe therapy may result in immunosuppression, as indicated by a significant reduction of defined lymphocyte subsets, Patients and Methods: peripheral blood cells of 23 tumour patients were treated subcutaneously with increasing concentrations of aqueous mistletoe extracts (Helixor). Results and Conclusions: Within an observation period of 7 months, the relative amount of lymphocytes and the number of natural killer (NK) cells increased while the number of lymphocyte subsets (i.e. CD19+ B cells, CD4+ T helper cells, CD8+ CD28- suppressor cells, CD8+ CD28-cytotoxic cells) and the proportion of CD25+ (activated) cells within T cells showed a statistically remarkable trend; due to the multiple test problem of statistical evaluation this trend is not allowed to be termed signíficant. The leucocytes decreased insignificantly within the observation period. However, we were unable to verify a suggested increase of defined lymphocyte subsets within 2-3 months after the onset of mistletoe treatment. Nevertheless, for the parameters CD19+ B cells, CD4+ T helper cells, CD8+ cells, CD8+ CD28+ cytotoxic cells and CD16+/CD56+ NK cells we observed statistically remarkable peaks within die 2nd and 3rd month of therapy, confirming the hypothesis. The responses to the extracts were obviously interindividually different; the immune responses especially of patients with a lower number of peripheral T cells were less significant as compared to those of patients with adequate T cell numbers. Surprisingly, even an increase of the drug concentration >3 ng mistletoe lectin (as determined within the whole plant extract) per kg body weight enhanced the number of CD4+ T helper cells. A decreased immunological reaction on mistletoe extracts was shown especially for patients with a reduced number of peripheral T cells, whereas patients with normal T-cell number were more reactive.
Enleitung
Die augenfälligste Wirkung von Extrakten aus Viscum album L. (VAL) ist ihre ausgeprägte Zytotoxizität gegenüber Tümorzellen, aber auch gegenüber humanen Fibroblasten und Lymphozyten. Diese ist vornehmlich bedingt durch die Induktion des Mistellektin(ML)-induzierten apoptotischen Zelltods [Übersicht in 1, 21 bzw. durch eine Viscotoxin-indwierte Membranaffektion mit nachfolgendem Azidentellen (nekrotischen) Zelltod [3, 41. Ausgehend von den Arbeiten Seegers [51 war zu vermuten, dass die biologischen Wirkungen von VAL nicht alleine durch ihre zytotoxische Potenz zu definieren sind, sondern dass die Applikation von VAL auch zur Aktivierung des Immunsystems führt [6-91. Dass Mistelextrakte bzw. definierte Inhaltsstoffe sowohl das unspezifische als auch das spezifische Immunsystem stimulieren. ist hinlänglich belegt [Übersicht in 101. Als biologisch relevante Inhaltsstoffe wurden hier die NIL [11-231, die Alkaloide [24-261, Rhamnogalakturonan [27-301, ein 5-kDa-Peptid [31-351, die Vesike1 [36, 371, die Viscotoxine [38, 39] und ein bisher nicht näher chat-Aterisiertes Antigen [40, 41] aus VAL genannt.
Nach subkutaner Gabe von VAL-Extrakten lassen sich verschiedene Reaktionen beobachten, die zwar Ausdruck einer Wit-kung der Extrakte sind, aber nicht gleichbedeutend mit dem Nachweis einer Wirksamkeit sein müssen. Hierbei kornrnt es zur Freisetzung von Akutphase-Proteinen, Stimulation des zellulären Immunsystems mit Zytokin- und fi-Endorphin-Freisetzung und Induktion von Anti-ML-Antikörpern [Übersicht in 17, 42-44]. Die immunologischen Reaktionen auf VAL sind jedoch individuell verschieden [45, 46] und prinzipiell nicht vorhersehbar. Darílber hinaus lassen sich nach In-vitro-Stimulation mit NIL-I, ML-II und NIL-III experimentell ausgeprägte interindividuelle Unterschiede im Ausmass der natürlichen Killer(NK)-Aktivität: der Leukozvtcn von Tumorpatienten [471 und auch dosisabhängige Unterschiede in der monozytären Freisetzung von Tumor-Nekrose-Faktor-a [48] finden.
(Prä-)Klinische Daten zur Entwicklung lymphozytärer- Subpopulationen von Tumorpatienten nach subkutaner VAL-Injektion beziehen sich zurneist auf einen Beobachtungszeitraum von wertígen Stunden [19-221 bzw. 2- bzw. 3-Punkt-Messungen nach 4- bzw. 12wöchiger Tberapiedauer [11-16, 231. Hierbei wurde eine definierte. konstante NIL-1-Konzentration (1 ng/kg KG) in cinem Mistelextrakt verabreicht. In der Praxis erfolgt die Dosier-ung jedoch meist nicht nach dem ML-Gehalt, sondem nach der individuellen Patientenreaktion (z. B. LokaIreaktion, Temperaturanstieg), die irrí Verlauf einer allmählichen Dosissteigerung auftritt. Dabei werden oft höhere Konzentrationen als 1 ng/kg KG erreicht. Zum Nachweis eines längerfristigen Anstiegs definierter Immunparameter sowie zum Ausschluss einer Iminunsuppression unter einem solchen Vorgehen wurden periphere Lymphozyten von Turnorpatienten, die nicht:fermentierte VAL-Extrakte-(Helixor") subkutan injiziert bekarnen, über einen Zeitraum von 7 Monaten durchflusszytornetrisch verfolgt.
Der vorliegenden Arbeit lag die Fragestellung zugrunde, ob eine subkutane Misteltherapie mit allmählicher Dosissteigerung bis zur Lokal- oder Temperaturreaktion die Lymphozyten des peripheren Blutes von Turnorpatienten beeinflusst.
Tab. 1. Patientenbeschreibung und Dosis
| Patient | Diagnose | CD4+T-Zellen/ul | Wirtsbaum | Monatliche Dosiseskalation, mg Pro Injektion; 2X wöchentlich | |||||||
| 0 | 1 | 2 | 3 | 4 | 5 | 6 | 7 | ||||
| UB/m/1939 | Hypernephrom | 933 | P | 1 | 5 | 10 | 10 | 20 | 20 | 30 | 30 |
| EB/w/1951 | Sigma-Karzinom | 1107 | M | 3 | 2,5 | 5 | 10 | 20 | 30 | 50 | 100 |
| PB/w/1955 | Mammakarzinom | 1451 | A | 1 | 1 | 1 | 5 | 5 | 5 | 5 | 5 |
| HC/m/1937 | Sigma-Karzinom | 887 | A | 3 | 7,5 | 20* | 30* | 50* | 50* | 50* | 50 |
| HE/m/1959 | Melanom | 893 | P-A | 1 | 0,01 | 0,01 | 0,005 | //1 | |||
| MH/m/1930 | Hypernephrom | 640 | P | 3 | 1 | 5 | 5 | 5 | 15 | 15 | 20 |
| FH/m/1966 | Melanom | 531 | P | 1 | 0,5 | 1 | 1 | 2,5 | 2,5 | 2,5 | 5 |
| DH/m/1938 | Leiomyosarkom | 826 | P | 5 | 20 | 20 | //2 | ||||
| LK/w/1932 | metastasiertes Kolokarzinom | 474 | M | 4 | 4 | 4 | 4 | 4 | 4* | 4* | 4* |
| HK/m/1943 | Immunzytom | 783 | A | 1 | 5 | 5 | 10 | //3 | |||
| IK/w/1925 | Mammakarzinom | 323 | M | 3 | 10 | 10 | //2 | ||||
| WK/w/1936 | Mammakarzinom | 359 | M | 1 | 3,5 | 2,5 | 2,5 | 2,5 | 2,5 | 2,5 | 2,5 |
| WL/w/1940 | Melanom | 796 | P | 1 | 0,1 | 0,1 | 0,1 | 0,5 | 0,5 | 0,5 | 0,5 |
| IM/w/1940 | Mammakarzinom | 373 | M-P | 3 | 0,5 | 0,1 | 0,1 | 0,1 | 1 | 0,75 | 1 |
| GM/w/1964 | Schilddrüsenkarzinom | 605 | M | 3 | 2,5 | 2,5 | 2,5 | 5 | 10 | 10 | 10 |
| BM/w/1944 | Sigma-Karzinom | 1426 | M | 3 | 3,5 | 10 | 17,5 | 20 | 25 | 30 | 50 |
| IP/w/1926 | Bronchialkarzinom | 235 | M | 1 | 1 | 21,4 | 35,7 | 100 | 100 | //4 | |
| MR/w/1951 | Mammakarzinom | 680 | A | 0,1 | 0,1 | 0,1 | 0,1 | 0,1 | 0,1 | 0,1 | 0,1 |
| MS/w/1937 | Mammakarzinom | 861 | M | 1 | 1 | 1 | 2,5 | 2,5 | 2,5 | 3,7 | 5 |
| ES/w/1939 | Melanom | 586 | P | 0,1 | 0,1 | 1 | 1 | 1 | 1 | 1 | 1 |
| MT/w/1947 | Cervixkarzinom | 723 | P | 1 | 1 | 1 | 5 | 5 | 5 | 5 | 5 |
| EV/w/1947 | Mammakarzinom | P | 1 | 1 | 1 | 1 | 1 | 1 | 1 | 1 | |
| GV/m/1934 | metastasiertes Kolokarzinom | P | 1 | 5 | 5 | 5 | 5 | 5 | 5 | 5 | |
Tab. 2a. Lymphozytärer Subpopulationen von 23 Tumorpatienten
| Monat | Leukozyten Zellen/ul |
Lymphozyten Zellen/ul |
Lymphozyten % der Leukozyten |
CD3 + T-Zellen/ut | CD16+/CD56+ NK-Zellen |
CD19+B-Zellen/ul | ||||||
| Mittelwert | SD | Mittelwert | SD | Mittelwert | SD | Mittelwert | SD | Mittelwert | SD | Mittelwert | SD | |
| 0 | 5683 | 1420 | 1690 | 649 | 30,4 | 10,5 | 1203 | 551 | 202 | 98 | 221 | 143 |
| 2 | 5913 | 1548 | 1732 | 720 | 30,3 | 11,9 | 1236 | 582 | 241 | 157 | 226 | 156 |
| 3 | 5707 | 1592 | 1820 | 841 | 31,7 | 10,4 | 1313 | 743 | 212 | 112 | 235 | 164 |
| 4 | 5700 | 1587 | 1635 | 588 | 29,5 | 9,6 | 1176 | 529 | 185 | 96 | 183 | 105 |
| 5 | 5516 | 1314 | 1617 | 533 | 29,7 | 8,7 | 1022 | 535 | 218 | 78 | 176 | 119 |
| 6 | 5281 | 1145 | 1641 | 584 | 31,0 | 7,8 | 1164 | 490 | 213 | 70 | 188 | 134 |
| 7 | 5714 | 994 | 1710 | 515 | 31,1 | 9,9 | 1214 | 439 | 211 | 84 | 195 | 133 |
| SD = Standardabweichung | ||||||||||||
Tab. 2b. Lymphozytärer Subpopulationen von 23 Tumorpatienten
| Monat | CD4+T-Zellen/u | CD8+Zellen/ul | CD4/CD8
Zellen/ul |
CD8+ CD28+
Zellen/ul |
CD8+ CD28-
Zellen/ul |
%CD25+ in
CD3+T-Zellen/ul |
%HLA -DR + in
CD3+ T-Zellen/ul |
|||||||
| Mittelwert | SD | Mittelwert | SD | Mittelwert | SD | Mittelwert | SD | Mittelwert | SD | Mittelwert | SD | Mittelwert | SD | |
| 0 | 726 | 319 | 509 | 389 | 1,87 | 0,87 | 197 | 99 | 312 | 338 | 14,6 | 7,2 | 7,3 | 4,4 |
| 2 | 779 | 372 | 507 | 396 | 1,85 | 0,87 | 189 | 110 | 320 | 331 | 14,8 | 6,6 | 7,0 | 3,1 |
| 3 | 805 | 351 | 544 | 531 | 1,92 | 0,82 | 208 | 96 | 328 | 452 | 15,0 | 5,6 | 7,4 | 4,0 |
| 4 | 713 | 277 | 498 | 372 | 1,82 | 0,83 | 189 | 88 | 307 | 312 | 13,5 | 4,4 | 7,3 | 3,7 |
| 5 | 717 | 370 | 447 | 207 | 1,76 | 0,78 | 180 | 85 | 266 | 163 | 13,1 | 3,8 | 7,6 | 5,3 |
| 6 | 729 | 366 | 478 | 203 | 1,69 | 0,89 | 193 | 95 | 284 | 158 | 13,3 | 4,9 | 6,5 | 3,2 |
| 7 | 817 | 323 | 454 | 196 | 2,03 | 0,94 | 210 | 107 | 242 | 121 | 16,0 | 5,9 | 5,0 | 2,4 |
| SD = Standardabweichung | ||||||||||||||
Tab. 3a. Relative Werte (relativ zum Ausgangswert in Monat(0)lymphozytärer Subpopulationen von 23 Tumorpatienten
| Monat | Leukozyten Zellen/ul | Lymphozyten | Lymphozyten % | CD3+ T- | CD16+/CD56+ NK- | CD19+B-Zellen/ul | ||||||
| Mittelwert | SD | Mittelwert | SD | Mittelwert | SD | Mittelwert | SD | Mittelwert | SD | Mittelwert | SD | |
| 0 | 0 | 0 | 0 | 0 | 0 | 0 | 0 | 0 | 0 | 0 | 0 | |
| 2 | 0.066 | 0.254 | 0.049 | 0.311 | 0.372 | 1.146 | 0.114 | 0.276 | 0.028 | 0.327 | 0.037 | 0.174 |
| 3 | 0.021 | 0.254 | 0.080 | 0.183 | 0.249 | 0.974 | 0.159 | 0.392 | 0.103 | 0.283 | 0.081 | 0.171 |
| 4 | -0.003 | 0.210 | 0.021 | 0.226 | 0.177 | 0.883 | 0.122 | 0.742 | 0.057 | 0.264 | 0.013 | 0.247 |
| 5 | -0.050 | 0.220 | 0.062 | 0.206 | 0.251 | 0.701 | 0.165 | 0.682 | 0.109 | 0.276 | -0.049 | 0.265 |
| 6 | -0.100 | 0.210 | 0.011 | 0.178 | 0.227 | 0.840 | 0.165 | 0.359 | 0.137 | 0.294 | -0.011 | 0.160 |
| 7 | 0.030 | 0.282 | 0.079 | 0.191 | 0.418 | 0.977 | 0.050 | 0.215 | 0.147 | 0.283 | 0.046 | 0.196 |
Tab. 3b. Relative Werte (relativ zum Ausgangswert in Monat(0)lymphozytärer Subpopulationen von 23 Tumorpatienten
| Monat | CD4+T-Zellen/u | CD8+Zellen/ul | CD4/CD8 Zellen/ul |
CD8+ CD28+ Zellen/ul |
CD8+ CD28- Zellen/ul |
%CD25+ in CD3+T-Zellen/ul |
%HLA -DR + in CD3+ T-Zellen/ul |
|||||||
| Mittelwert | SD | Mittelwert | SD | Mittelwert | SD | Mittelwert | SD | Mittelwert | SD | Mittelwert | SD | Mittelwert | SD | |
| 0 | 0 | 0 | 0 | 0 | 0 | 0 | 0 | 0 | 0 | 0 | 0 | 0 | 0 | 0 |
| 2 | 0.065 | 0.175 | 0.064 | 0.331 | 0.023 | 0.235 | -0.013 | 0.227 | 0.212 | 0.581 | 0.059 | 0.302 | 0.109 | 0.563 |
| 3 | 0.098 | 0.173 | 0.087 | 0.179 | 0.007 | 0.141 | 0.120 | 0.281 | 0.132 | 0.351 | 0.131 | 0.444 | 0.100 | 0.482 |
| 4 | 0.040 | 0.310 | 0.020 | 0.225 | 0.017 | 0.173 | 0.076 | 0.416 | 0.102 | 0.434 | 0.069 | 0.364 | 0.163 | 0.596 |
| 5 | 0.019 | 0.165 | 0.038 | 0.215 | -0.018 | 0.159 | 0.080 | 0.271 | 0.079 | 0.400 | 0.033 | 0.418 | 0.203 | 0.981 |
| 6 | -0.003 | 0.157 | -0.005 | 0.217 | -0.004 | 0.169 | 0.045 | 0.263 | 0.050 | 0.489 | 0.089 | 0.489 | 0.046 | 0.539 |
| 7 | 0.067 | 0.182 | 0.063 | 0.259 | 0.008 | 0.170 | 0.092 | 0.363 | 0.135 | 0.431 | 0.216 | 0.503 | -0.058 | 0.518 |
Patienten und Methoden
Patienten und Therapie
23 Tumor-Patienten unter Misteltherapie (Helixor) wurden nach Aufklärung und Einwilligung der Patienten prospektiv untersucht.
Bei dem verwendeten Mistelextrakt handelt es sich um ein zugelassenes Präparat. Die Anwendungsbeobachtung wurde entsprechend den ethischen Normen, wie sic in der Deklaration von Helsinki festgelegt wurden, und den Bestimmun2en des güItigen Arzneimittelgesetzes durchgeführt. Hierzu wurde jewei1s vomiittags Blut aus der Armvene entnommen
(EDTA-Blut) und sofort durchf1usszytometrisch analysiert. Die klinischen Daten der Patienten,
bei denen Jer Primärtumor bercits mit der üblichen Therapie behandelt worden i;ar und
bei denen cine Chemotherapie oder Bestrafflung mindestens 3 Monate zurück1ag, sind in der Tabelle 1 aufgelistet. Um
schärfere Bedin-gungen fur die statistische Auswertung zu erzielen, wurden Patienten mit unte
rschiedlich,-n Tumorentitäten und stark differierenden Basiswerten für die
periphe7,-n Lymphozyten cingeschlossen. Das Durchschnittsalter der Patienten. wn Jenen 8
männlichen und 13 weiblichen Geschlechts waren, bet,-ue 54 ± 12 Jahre. Sechs Patienten hatten
im peripheren Blut zwischen -200 Und 500 CD4+ T-Helfer/Induktor-Lymphozytenipil, 8 Patienten zwischen 501
L-nd 800 Zellen/pl, 6 Patienten zwischen 801 und 1000 Zellen/pl und 3 Patienze-n > 1000 Zellen/pd.
Den Patienten wurde jewei1s 2-3 x wöchentlich vormittags HelLxor subkuzan injiziert. Die eingesetzten
Präparate zeichnen sich durch einen hohen Geb-31t des N-Acetyl-Galaktosamin-bindenden
ML-111 aus (NIL-Gehalt Helixorl P 950 ng/mi; Helixorlo M 215 ng/ml, Helixor l~ A 260 n_elml~ ELLA). wobei
cotoxine unterhalb der Nachweisgrenze liegen "5 pt,-Iml; HP1-Q. Die subkutan verabreichte Dosis wurde nach folgendem Schema gesteigert. bis
e--ne deutliche Lokalreaktion auftrat: 3x 1 rng, 3x 5 mg, 3x 10 rng. 2x 20 me. ' x 30 rng, 2x 20 mg, 2x 30 rng, 3x 50 rng.
Bei sehr starken Lok-alreaktioren (Rötung >5cm, Schwellung, Druckdolenz) oder
TemperaturerhöhUne >38'C wurde bis zum Abklingen der Reaktionen pausiert und cine
jCNA,.-ils geringere Dosis verabreicht. Die individuell eräelte Dosis und der
aus~ewähIte Wirtsbaum sind in Tabelle 1 angegeben. Bei 6 Patienten W-Urde -4ie Dosis
während des Bcobachtungszeitraums auf > 20 me Helixor erhoht. ~i -, hrend bei 10 Patienten nur cine geringe Dosissteigerung (5 lo rng He[ix,,r)
möglich war. Bei 2 Patienten traten schon primar schr starke Lokalreak-.--onen auf, die auch
bei deutlicher Dosisreduktion wieder auszul(5~en \;aren, ~o dass cin Wechsel des Wirtsbaums versucht wurde.
Bei 1 Patienten kar-,- es hier aufgrund der übermässigen Reaktionen zum Therapicabbruch.
Lymphozytendifferenzierung
Die Zellen des peripheren Bluts wurden mittels monoklonaler Antikör--e.(mAk;
Coulter-Immunotech, Krefeld, Deutschiand) durchfl~tometi-,sch (EPICS XL-MCL, Coulter, Krefeld, Deutsch1and) differenziert:
CD19- BLymphozyten, CD3+ T-Lymphozyten, CD4+ T-Helfer[Induktor-Lvmph<-~z%ten, CD8+
T-Suppressor-/zytotoxische Lymphozyten, CD8+ CD28+ zytotolasche Lymphozy~en, CD8+
CD28- suppressorische Lymphoz-.ien, CD16-, CD56+ NK-Zellen, CD25+ (Interleukin-2-Rezeptor-exprimier'ende)
T-L,.-mphozyten, HLA-DR+ (MHC-Klasse-II-Molekül-HLA-DR-exprimieren.Je) T-Lymphozyten.
Statistik
Ausgewertet wurden die Daten von 13 Blutparametern der Patienten ira Verlauf von 7 Monaten. Die
Messgrössen wurden sowohl ais absolute Werte (Zellen/W), ais auch als relative Werte (relativ zum Ausgangswert
bei ~t 0) betrachtet (Tab. 2 und 3). Da davon auszugehen ist, dass jeder Pati-ent cine individuelle Verteilung der
lymphozytären Subpopulationen aufwcisi
Forsch Komplementärmed 1999;6:196-204 197
(die am ehesten durch den Ausgangswert repräsentiert wird). ist die Betrachtung der relativen Werte
im allgemeinen aussagekräftiger.
Mit dieser Untersuchung sollte überprüft werden, ob sich die einzelnen Messgrössen
im Laufe der Zeit systematisch verändem. Die Hvpothese ist, dass die subkutane Misteltherapie nach den
Helixor-Richtlinien keine Irnmunsuppression - ausgedrückt als signifikante Reduktion definierter Populationen
- zur Folge hat. Es besteht jedoch die Vermutung, dass im 2. bzw. 3. Monat ein höherer Wert insbesondere für CD4+
T-Helfer,Induktor-Zellen, CD16+/CD56+ NK-Zellen und der CD19+ B-Zellen auftritt.
Die zeitlichen Verläufe wurden als Regressionsmodell aeschätzt. Dabei wurden je zwei
Modellansätze berechnet. Der erste enthält nur die Zeit (den Monat) als Einflussfaktor (Modellansatz 1 ohne Indikatoren auf Monat 2 und 3),
berücksichti,-t somit obige Vermutung nicht. Damit soll zunachst nur ein allgemeiner Trend
(gleichmässige SteigerunglSenkun.g) der Blutparameter geschätzt werden. Der zweite Modellansatz
enthält neben der Zeit auch Dummv-Variablen für den 2. und das 3. Monat als
Einflussgrössen (Modellans.tz 2 mit Indikatoren auf Monat 2 und 3). Damit soilte cine (über den allgemeinen Trend
hinaus-ehende) systematische Veränder-ung im 2. bzw. 3. Monat geschätzt werden. Zur Überprüfung wurde mit Hilfe eines
F-Tests untersucht, ob in mindestens einem der beiden Monate cine signifikante
Erhöhung der Messwerte beobachtet wurde. Dieses Vorgehen ist zur Adjustier-ung des Signifikanzniveaus notwendig. Sofem sich die
Wer-te des 2. und des 3. Monats als nicht signifikant unterschiedlich erweisen, ist cine allgemeu*ie
Trendschätzung (erster Modellansatz) günstiger.
Weiterhin sollte ein Test der Häufigkeit der Monate mit maximaler Messung untemornmen werden. Die Nuilhypothese, besteht dabei in der Annahme, dass in keinem Monat ein Messwert systematisch
höher oder niedriger ausfäl1t. Somit müsste iin Monat mit der maximalen Messung Gleichverteilung herrschen Geder Monat wird mit gicicher Wahrscheinlichkeit als cin
Maximal-Monat beobachtet). Dazu wird je, Patient und Messgrasse der MaximalMonat bestimmt. Sollte obige Hypothese zutreffen, díann müsste der 2. und 3. Monat vermehrt: als der "Monat mit maximaler Messung" bezeichnet werden. Andernfalls müsste man nur in 217 der
Fälle (28,5%) den Maximal-Mo
nat als 2. oder 3. Monat bcobachten, in 5/7 der Fälle (71.5%) als cinen Jer anderen. Solange cin positiver Trend besteht, verschieben sich diese
Ann.~-hmen zu Gunsten der NuIlhvpothese (keine Häufung im 2. und 3. Monat. _Jer Anteil in diesen Monaten
wäre geringer). Dies ist cine eher konserva~~~e Verzerrung, und daher im Sinne des Tests
zulässig. Die beobachteten Trends waren, soweit sie statistisch auffällig waren, immer positiv (Tab. 4); der
-est kann also angewandt werden.
Da parallel 13 verschiedene Parameter auf Veränderung in der Zeit getc~-,et werden, musste das
Pro-Studie-Signifikanzniveau (das Si2mfikanzni,---au wurde auf a= 0,05 festacicit
g ) entsprechend auf UA = 0,05113 = 0.0038-1 rigiert werden (nach Bonferroni-Holm).
| Messgrösse | Parameter | Schätzwert | T für H0 | Prob>[T] | F für H0 | Prob>F |
| bTrend*, % | bTrend = 0 | b2.Monat
= 0 b3.Monat = 0 |
||||
| CD4+T | %Monat | 0.5476 | 1.339 | 0,1831 | 2.8404
|
0.0620 |
| 2.Monat | 5.3815 | 1.391 | 0,1667 | |||
| 3.Monat | 8.1982 | 2.021 | 0,0454 | |||
| CD28+ CD8+ | %Monat | 1.6307 | 1.763 | 0,0803 | 2.3914 | 0.0955 |
| 2.Monat | 7.8986 | 2.045 | 0,0428 | |||
| 3.Monat | 8.2893 | 0.903 | 0,03680 | |||
| CD3+ T- | %Monat | 0.0276 | 0.067 | 0,9471 | 2.2345 | 0.1111 |
| 2.Monat | 3.6143 | 0.0922 | 0,3584 | |||
| 3.Monat | 8.0485 | 1.958 | 0,0524 | |||
| Leukozyten | %Monat | -0.5540 | -1.138 | 0,2570 | 1.6324 | 0.1944 |
| 2.Monat | 7.7202 | 1.677 | 0,0959 | |||
| 3.Monat | 3.7583 | 0.779 | 0.4376 | |||
| CD8+ | %Monat | 0.5228 | 1.032 | 0.3038 | 1.5597 | 0.2141 |
| 2.Monat | 5.4001 | 1.127 | 0.2617 | |||
| 3.Monat | 7.1772 | 1.429 | 0.1554 | |||
| NK- | %Monat | 4.8984 | 2.562 | 0.0115 | 1.2463 | 0.2910 |
| 2.Monat | 7.4058 | 1.515 | 0.1321 | |||
| 3.Monat | 0.2150 | 0.539 | 0.5910 | |||
| CD28+ CD8+ | %Monat | 1.2942 | 2.033 | 0.0440 | 1.0910 | 0.3389 |
| 2.Monat | -3.9188 | -0.651 | 0.5162 | |||
| 3.Monat | 8.0899 | 1.282 | 0.2023 | |||
| Lymphozyten | %Monat | 0.7783 | 1.696 | 0.0923 | 0.9997 | 0.3708 |
| 2.Monat | 3.2962 | 0.759 | 0.4491 | |||
| 3.Monat | 5.6409 | 1.239 | 0.2175 | |||
| CD19+ B- | %Monat | 2.2038 | 2.190 | 0.0304 | 0.6779 | 0.5096 |
| 2.Monat | 6.9932 | 0.742 | 0.4593 | |||
| 3.Monat | 9.3346 | 0.944 | 0.3472 | |||
| %CD25+ in CD3+ | %Monat | 1.9124 | 2.267 | 0.0251 | 0.4024 | 0.6696 |
| 2.Monat | 2.0452 | 0.256 | 0.7981 | |||
| 3.Monat | 7.3158 | 0.874 | 0.3836 | |||
| %HLA-DR+ in CD3+ | %Monat | 1.3917 | 1.093 | 0.2764 | 0.3165 | 0.7293 |
| 2.Monat | 8.1344 | 0.675 | 0.5006 | |||
| 3.Monat | 5.8441 | 0.463 | 0.6443 | |||
| %Lymphozyten | %Monat | 2.0728 | 3.585 | 0.0005 | 0.2832 | 0.7538 |
| 2.Monat | -1.3456 | -0.242 | 0.8088 | |||
| 3.Monat | 4.0470 | 0.696 | 0.4876 | |||
| CD4/CD8-Ratio | %Monat | 0.0105 | 0.029 | 0.9769 | 0.2385 | 0.7882 |
| 2.Monat | 2.3255 | 0.677 | 0.4996 | |||
| 3.Monat | 0.6474 | 0.180 | 0.8576 | |||
| * Schätzwert bTrend = Steigerung von Ausgangwert pro Monat | ||||||
Tab. 5. Relative Steigerung von Ausgangswert pro Monat (sortiert nach Signifikanz)
| Messgrösse | Schätzwert | Standardfehler | T für H0 | Prob>[T] | aKorr | Signifikanz |
| bTrenda, % | bTrend = 0 | |||||
| %Lymphozyten | 2.1614 | 0,0053 | 4,018 | 0,0001 | 0,00385 | Signifikant |
| NK-Zellen/ml | 5.7561 | 0,0178 | 3,219 | 0,0016 | 0,00417 | Signifikant |
| %CD25+ in CD3+ | 2.1681 | 0,0078 | 2,765 | 0,0065 | 0,00455 | * |
| CD19+ B-Zellen/ml | 2.6270 | 0,0093 | 2,807 | 0,0058 | 0,00500 | * |
| CD28- CD8+Zellen/ml | 2.2381 | 0,0087 | 2,565 | 0,0114 | 0,00556 | * |
| CD28+ CD8+Zellen/ml | 1.4509 | 0,0059 | 2,440 | 0,0160 | 0,00625 | * |
| Lymphozyten/ml | 1.0106 | 0,0042 | 2,358 | 0,0198 | 0,00714 | * |
| CD4+ T-Zellen/ml | 0,8971 | 0,0038 | 2,317 | 0,0220 | 0,00833 | * |
| CD8+Zellen/ml | 0,8429 | 0,0047 | 1,775 | 0,0781 | 0,01000 | n.s. |
| %HLA-DR+ in CD3+ | 0,7286 | 0,0118 | 1,462 | 0,1461 | 0,01250 | n.s. |
| CD3+ T-Zellen/ml | 0,3367 | 0,0039 | 0,862 | 0,3902 | 0,01667 | n.s. |
| Leukozyten/ml | -0,2867 | 0,0045 | -0,628 | 0,5311 | 0,02500 | n.s. |
| CD4/CD8-Ratio | 0,0769 | 0,0033 | 0,228 | 0,8199 | 0,05000 | n.s. |
| * statistisch auffällig a Schätzwert bTrend = Steigerung im Vergleich zum Ausgangwert pro Monat b nach Bonferroni-Holm nicht mehr relevant im Vergleich mit dem beobachteten p-Wert Kursiv = a < 0,05; fett a< aKorr (Bonferroni - Holm - Korrektur); n.s.= nich signifikant |
||||||
Tab. 6. Relative Steigerung von Ausgangswert pro Monat unter Berücksichtigung etwaiger Effekte im 2. oder 3. Monat, einseitiger Test für H0 bTrend>=0
| Messgrösse | Schätzwert | T für H0 | Prob>T | aKorr | Signifikanz |
| bTrenda, % | bTrend>=0 | ||||
| %Lymphozyten | 2,0728 | 3,585 | 0,0003 | 0,00385 | Signifikant |
| NK-Zellen/ml | 4,8984 | 2,562 | 0,0058 | 0,00417b | * |
| %CD25+ in CD3+ | 1,9124 | 2,267 | 0,0126 | 0,00455b | * |
| CD19+ B-Zellen/ml | 2,2038 | 2,190 | 0,0152 | 0,00500b | * |
| CD28+ CD8+Zellen/ml | 1,2942 | 2,033 | 0,0220 | 0,00556b | * |
| CD28- CD8+Zellen/ml | 1,6307 | 1,763 | 0,0401 | 0,00625b | * |
| Lymphozyten/ml | 0,7783 | 1,696 | 0,0461 | 0,00714b | * |
| CD4+ T-Zellen/ml | 0,5476 | 1,339 | 0,0916 | 0,00833b | n.s. |
| %HLA-DR+ in CD3+ | 1,3917 | 1,093 | 0,1382 | 0,01000b | n.s. |
| CD8+Zellen/ml | 0,5228 | 1,032 | 0,1519 | 0,01250b | n.s. |
| CD3+ T-Zellen/ml | 0,0276 | 0,067 | 0,4736 | 0,01667b | n.s. |
| CD4/CD8-Ratio | 0,0105 | 0,029 | 0,4885 | 0,02500b | n.s. |
| Leukozyten/ml | -0,5540 | -1,138 | 0,8715 | 0,05000b | n.s. |
| * statistisch auffällig a Schätzwert bTrend = Steigerung von Ausgangwert pro Monat b nach Bonferroni-Holm nicht mehr relevant zum Vergleich mit dem beobachteten p-Wert Kursiv = a < 0,05 |
|||||
Tab. 7. Test auf gleichmässige Verteilung der Monate mit der maximalen Messung
| Messgrösse | Beobachteter Anteil Monatmax 2./3.Monat, % |
Beobachteter Anteil Monatmax restliche Monate, % |
Chi2- Wert |
p |
| Leukozyten//ml | 43,48 | 56,52 | 2,504 | 0,1135 |
| Lymphozyten//ml | 21,76 | 78,26 | 0,526 | 0,4683 |
| %Lymphozyten | - | - | - | - |
| CD3+ T-Zellen/ml | 43,48 | 56,525 | 2,504 | 0,1135 |
| CD4+ T-Zellen/ml | 47,83 | 52,175 | 4,178 | 0,0409 |
| CD8+Zellen/ml | 47,83 | 52,175 | 4,178 | 0,0409 |
| CD4/CD8-Ratio | - | - | - | - |
| NK-Zellen/ml | 47,83 | 52,175 | 4,178 | 0,409 |
| CD19+ B-Zellen/ml | 47,83 | 52,175 | 4,178 | 0,0409 |
| %CD25+ in CD3+ | - | - | - | - |
| CD28+ CD8+Zellen/ml | 47,83 | 52,175 | 4,178 | 0,0409 |
| CD28- CD8+Zellen/ml | 43,48 | 56,525 | 2,504 | 0,1135 |
| %HLA-DR+ in CD3+ | 43,48 | 56,525 | 2,504 | 0,1135 |
| Theoretische Anteil | 28,575 | 71,42 | ||
| Monatmax = Monat, in
den die maximale Messung fällt; theoretischer Anteil = Anteil der
Maximal-Monate unter der Nullhypothese (alle Monate sind gleich - kein
Trend, kein besonders hervorstehender Monat) a Bei % Lymphozyten, % CD25 in CD3+ und NK-Zellen konnte bei einigen Patienten aufgrund gleicher Messwerte keine eindeutige Zuordnung des maximal-Monats erfolgen. |
||||
Ergebnisse
Das periphere Blut von 23 nichtselektionierten Patienten mit unterschiedlichen Tumorentitäten und deuflich differierenden Lcmphozytenzahlen wurde über einen Zeitraum von 7 Monaten
dur-zhflusszytometrisch differenziert. Die Verteilung starker Lokalre~aktionen zeigte keine Abhängigkeit von der Zahl peripherer
CD4-, T-Zellen (Tab. l). Tendenziell konnten jedoch bei den Patienien mit einer höheten Anzahl peripherer CD4+
T-Zellen auch höbere Konzentrationen appliziert werden als bei den Patienten mit niedrigerer Zellzahi.
Geprüft werden sollte, ob es einen generellen, zeitlich konstanten
Trend (flT,~nd: Steigerung oder Senkung) in den Messgrössen !eíbt
bzw. ob es einen flT,,,,d und/oder eine darüber hinausp-ehende Ver
änderung im 2. Monat (fl2monat) oder im 3. Monat in den
Messgrössen gibt. Wie in Tabelle 5 dargestellt, konnte für den --kn
Icil der Lympítozyten und die Zahl der NK-Zellen ein signifikanter Trend zur Vermeltrung beobachtet werden, wobei der Anteil der Lymphozyten um rund 2,1 % pro Monat und die Zahl der NKZellen um rund 5,8% pro Monat anstiegen (dies gilt für den Zeitraum 0 bis 7 Monate). Für die Anzahl der Lymphozyten, insbesondere die der CD4+
T-Zellen, CD28- CDS+ Zellen, CD28+ CDS+ Zellen, CD19+ B-Zcllen, sowie den Anteil der CD25+
T-Zellen zeigte sich cin statistisch auffälliger Trend, der aufgrund des multiplen Testproblems der Statistik nicht als signifikant bewertet werdej~_durfte. Füt- den prozentualen Anteil an LympItozyten konnte
signifikant aus9eschIossen werden, dass es im Mittel zu einem Abfall kommt, wältrend für die 6 weiteren Parameter zumindest ein statistisch auffälliger positiver Trend auffiel. Die Zah] der Leukozyten wies als einzige Messgrösse cinen negativen Trend auf.
Tabelle 4 gibt die Ergebnisse der ScItätzung eines zusätzlichen Effekts im 2. und
im 3. Monat nach Therapiebeginn für die einzelnen Messgrössen wieder. Die Spalte "Prob > F" enthält die Signifikanz der
Null-Hylpothese HO. Es konnte gezeigt werden, dass es weder im 2. noch im 3. Monat zu einem über einen allgemeinen Trend hinausgehenden Anstieg der Parameter kommt.
Die These. dass es innerhalb der ersten 2 Monate nach Therapiebeginn zur zablenmässigen Vermehrung definierter Subpopulationen kommt, führte zu einem einseitigem Test, bei dem nur geprüft werden sol], ob PTV,,d 2t 0
iSt- Mit Ausnahme der Leukozyten haben wir nur posítive Trends beobachten können. Das Unberücksichtigtlassen etwaiger positive Effekte
im 2. und 3. Monat, auch wenn diese hier nicht signifikant waren, würde die Trendschätzung nach oben (ins positive) verzerren. Daher soll für diese Analyse Modellansatz 2 betrachtet werden. Die Signifikanzen dieser Fragestellung ergeben sich dabeí (bei positivem Trendschätzer) als die
HäIfte der p-Werte in Spalte "Prob > ITI" der Tabelle 6 (Kategorie: % pro Monat). Für den Schätzer der Leukozyten (negativer Trendschätzer) beträgt dieser 1 minus der HäIfte des
p-Werts in Spalte "Prob > ITI".
Da durch die obigen Berechnungen kein statistisch ausreichender Beweis für die Hypothese gefunden wurde, dass es
im 2. oder 3. Monat nach Therapiebegirin zur Vermehr-ung definierter Subpopulationen kommt, sollten je Patient die Monate mit der maxima
]en Nlessung untersucht wcrden. Wie in Tabelle 7 dargestellt, zciqte sich für die Anzahl der
NK-Zellen, CD19+ B~Zellen. CD4+ T-Zellen und CDS+ Zellen (insbesondere CD28+ CDS+ Zellen) cine statistisch auffällige Häufuna der
Maximal-Messungen in den Monaten 2 oder 3. Unter Berücksichtigung des multiplen Testproblems müssen diese Beobachtungen als statistisch auffällig bezeichnet werden.
Wie in Abbildung 1 dargestellt, ergaben sich jedoch deutliche interindividuelle Unterschiede in den Reaktionen definierter Immunparameter. Reaktionsoptirna (definiert als Vermehrung CD4+
T-Zellen) liessen sich zwischen 2 und 4 Monate nach Beginn der Misteltherapie beobachten. Insbesondere Patienten mit höhcrer Zahl peripherer CD4+
T-Zellen (> 800 Zellen/ptl) zeigten
cine Vermehruna der CD4+ T-Zellen. Die Patienten mit reduzierter Zahl peripherer CD4+
T-Zellen (- 400 Zellen/[il) wiesen gerinae Modulationen der peripheren Lymphozyten auf Unklar ist, ob hier cine weitere Dosissteigerung möglicherweise nicht doch zur Vermehrung der Subpopulationen geführt hätte
- dies war jedoch aufgrund ausgeprägter Lokalreaktionen insbesondere bei den Patienten mit reduzierter Zellzahl nicht möglich. In allen Fällen waren bei kontinuierlicher Tlerapie passagere "Gegenregulationen" (rückläufige Zellzah1) zu beobachten. Eine Immunsuppression liess sich auch bei
ML-Konzentrationen > 1 ng/kg KG nicht nachweisen. Die physiologischen Reaktionen gegenüber dem Antigen "Mistel" waren jedoch individuell unterschiedlich und nicht vorhersehbar.
Dískussion
Untersuchungen zur Entwicklung lymphozytärer Subpopulationen von Tumorpatienten nach subkutaner
VAL-Injektion beziehen sich zumeist auf einen Beobachtungszeitraurn von wenigen Stunden
[19-221 bzw. 2bzw. 3-Punkt-Messungen nach 4- bzw. 12wöchiger Therapiedaucr [11-16, 231, wogegen Untersuchungen unter praxisnälteren Bedingungen, also auch längerfristige und kontinuierliche Beobachtungen, bisher nicht vorliegen. M der Untersuchung der Lytnphozytenwerte von 23 nichtselektionierten Tumorpatienten mit unte rschiedliche n Tumorentitäten und deutlich differierenden Basiswerten der Lympbozyten konnte während des
7monati-en Beobachtungszeitraunts im Gesarnl:koilektiv eine statistisch -esicherte anteilmässige
Vermeht-ung der Ly1mphozyten und der Zahi der NK-Zellen beobachtet werden, wobei. umgerechnet auf den
NIL-Gehalt im Gesamtextrakt, zum Teil > 5 no NIL/kg KG verabreicht wurden. Ein statistisch auffälliger Trend fand sich ebenfalls für die Zahl der
Lymphozyten-Subpopulationen (CD4+ T-Zellen, CD28- CDS+ Zellen, CD28+ CDS+ Zellen. CD19+ BZellen) und den Anteil CD25+
T-Zellen. Diese Ergebnisse sind konsistent nlit den von Beuth et al. [14] beobachteten Reaktionen peripherer Lymphozyten nach 4wöchiger Misteitherapie. Sie beschrieben die subkutane Behandlun.c, von 40 Patientinnen rnit Brustkrebs (Stadium IPIV) mit
NIL-1 bzw. einem auf M1- 1 standardisierten VAL-Extrakt in einer Dosierung von 1 na kg KG. Hierbei karn es bei je 10 der Patienten zum signifikanten Anstieg der CD4+
T-1-lelfer/Induktor-Lymphozyten, der NK-Zellen und der CD25+ T-Zellen [14]. In einer anderen Untersuchune, der Arbeitsgruppe wurden 68 Patientinnen mit Brustkrebs (Stadium 111IV) mit dem auf
NIL-I-standardisierten VAL-Extrakt (1 ng/kg KG) behandelt. Hierbeí konnten jedoch 6 und 12 Wochen nach Beginn der subkutanen Misteltherapie keine signifikanten Veränderungen lympbozytärer Subpopulationen
fest-estel1t v~erden [231. Auch M Gliorn-Patienten, die zusätzlich zur destruktiven Standardtherapie einen auf
NIL-1 standardisierten VAL-Extrakt injiziert bekamen. konnte im Vergleich zur Kontrollaruppe (n = 13) während eines 6monatigen Beobachtungszeitraums lediglich nach 3 Monaten
si-nifikante Untersehiede für die T-Zellen (CD4+ und CDS+) und CD25+ T-Zellen in der
VAL-Gruppe (n = 13) festgestel1t werden í491.
Aus Voruntersuchungen [14, 501 war zu vermuten. dass es trotz deutlicher interíndividueller Reaktionsunterschiede bei den Tumorpatienten innerhalb von
4-8 Wochen als Reaktion auf das An tigen "Mistel" zur Vermehrung definierter lymphozytärer Subpo pulationen kornrnt. Zu vermuten ~e, dass eine zu envartentit Immunstimulation
im Sinne einer Vermehrun- definierter Lymphozyten-Subpopulationen nur in diesem Zeitraum auftritt und irp späteren Verlauf aufgrund einer Toleranz gegenüber dem Antigeri "Mistel" keine weíteren Reaktionen nachweisbar sind. Dies konnte auf Basis der vorliegenden Daten für das inhomogene Patientenkollektiv nicht bewiesen werden. Dennoch zeigte sich eine statistisch auffällige Häufigkeitsverteilung der
Maxirnal-Monate für CD19+ B-Zellen, CD4+ T-Zellen, CD8+ Zellen, CD8+ CD28~ zytotoxische Zellen und CD16+/CD56+
NK-Zellen im 2. und 3. Monat nach Tberapiebeginn, wobei es im Beobachtungszeitraum bei adäquater Dosiseskalation zu einer Vermehruna der
Lyrnphozyten-Subpopulationen kam. Zudem zeigte sich. dass insbesondere Patienten mit normaler bzw. höherer Anzahl von
CD4T-Zellen deutlich reagibler hinsichtlich einer zahlenmässigen Vermehrung der CD4+
T-Zellen waren als Patienten mit reduzierter Zellzahl. Die Dosis des VAL-Extrakts konnte bei erst!zeriannten Patíenten zudem deutlich stärker gesteigert werden (>5 ne NIL/kg KG, berechnet aus
ML-Gehalt im Gesamtextrakt), ohne dass es zu einem Rückgang der Zellzahl gekommen wäre. Von Bcuth el al. [15] wurde postuliert, dass es M einer DosisüberschreitunQ > 1 ng
ML-I/kg KG zur Irnmunsuppression komrnt [15]. In der diese H-, pothese belegenden Untersuchung wurden jedoch selbst bei subkutaner Applikation von 5 ng
ML-I/kg Maus ausser einer leichten Reduktion der Peritoneal-Makrophagen keine signifikanten Anderungen
im Vergleich zu den Kontrollwerten hinsichtlich Thyrnusgewicht, Anzahl und Verteilung der
Tbymozyten-Subpopulationen, Anzahi peripherer LYrnphozyten, Monozyten und Granulozyten sowie der
Aktivierungsmarker-Expression auf Ls-rnphozy ten und Monozyten/Makrophagen gefunden.
Ziel der hier vorgestellten Arbeit war es zu überprüfen, ob die subkutane Misteltherapie in üblicher Dosissteigeruna zur Immunsuppression oder Immunstimulation, ausgedrückt als signifikante Reduktion oder
Vermehrun- definierter Populationen, führt. Eine Immunsuppression konnte jedoch nicht nachizewiesen werden. vielmehr karn es
im Beobachtungszeitrautn bei adäquater Dosiseskalation zur Vermehí-una definierter
Lymphozytert-Subpopulationen, Ob diese Reaktionen auch von Minischer Relevanz sind,
muss geprüft werden.
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